48,95%CI0 26-0 88, p=0 02)和更长的无进展生存期(PFS)(HR=0 52,95%CI0 29-0 95,

48,95%CI0.26-0.88, p=0.02)和更长的无进展生存期(PFS)(HR=0.52,95%CI0.29-0.95, p=0.03);另外,NSCLC术后肿瘤分期也是影响患者术后总生存期和无进展生存期的重要因素(HR=1.63,95%CI1.19-2.23,p<=0.04)。两组患者的生存情况与性别、年龄、非小细胞肺癌的病理类型和肿瘤分化程度等因素在统计学上无显著差异(p>0.05)。

结论:非小细胞肺癌(NSCLC)患者术后接受个体化治疗在OS和PFS上明显优于非个体化治疗组,让患者获益更大。另外,不管NSCLC患者术后接受个体化治疗还是非个体化治疗,NSCLC病理分期越早,淋巴结未出现转移的患者生存情况越好。因此,非小细胞肺癌患者术后个体化治疗值得在临床工作中推广。
研究目的 探讨快速康复外科理念在支气管袖状肺叶切除治疗中央型肺癌中的应用。 方法 选择在我科接受支气管袖状肺叶切除治疗的中央型肺癌患者57例,随机分为2组,其中23例(快速康复处理组),围手术期采用快速康复外科理念进行处理;34例(对照组)围手术期按传统方法处理。 结果 快速康复处理组术后排气时间、术后拔除胸腔引流管时间、术后住院时间、住院总费用均低于对照组(P<0.05)。快速康复处理组发生切口感染/裂开2例(8.70%),心血管并发症1例(4.35%),肺不张/肺部感染3例(13.04%),显著低于对照组,差异有统计学意义(P
目的:分析非小细胞肺癌(Non-small Selleckchem Azacitidine cell lung cancer,NSCLC)组织中血管内皮生长因子C(Vascular endothelial grow factor-C,VEGF-C)和微淋巴管密度(Microlymphatic vessel density,MLVD)的表达,并探讨其与NSCLC的临床病理特征等生物学行为关系。 方法:应用免疫组织化学方法(Immunohistochemistry,

IHC)检测52例NSCLC组织和19例癌旁正常肺组织中VEGF-C的表达情况,并用淋巴管内皮细胞特异性抗体D2-40行IHC染色,观察NSCLC组织和癌旁正常肺组织MLVD生成,并结合临床病理特征及预后进行分析。 JNJ-26481585半抑制浓度 结果:VEGF-C在NSCLC组织中和癌旁正常肺组织中阳性表达率分别为69.2%(36/52)和31.6%(6/19),两组比较差异有统计学意义(P0.05),但与肿瘤分化程度、肿瘤大小、淋巴结转移及TNM分期相关(P均<0.05);VEGF-C阳性表达NSCLC患者术后1、3、5年生存率分别为86.1%、27.8%、16.7%,与阴性表达患者术后1、3、5年生存率93.8%、68.8%、50.0%相比,两组患者术后3年、5年生存率差异均有统计学意义(P<0.05),且两组患者中位生存期分别为26个月和58个月,比较差异亦有统计学意义(P<0.05);MLVD仅与患者肿瘤分化程度、肿瘤淋巴结转移、TNM分期相关(P均<0.05);MLVD阳性表达NSCLC患者术后1、3、5年生存率分别为85.0%、27.5%、20.0%,与阴性表达患者术后1、3、5年生存率100%、83.3%、50.0%相比,两组患者术后3年、5年生存率差异有统计学意义(P<0.05),MLVD阳性表达组与阴性表达组患者中位生存期分别为26个月和53个月,比较差异有统计学意义(P
NSCLC的治疗中,吉非替尼(Gefitinib)作为抗肿瘤治疗的靶向药物是表皮生长因子受体(Epidermal

Growth Factor Receptor,EGFR)酪氨酸激酶抑制剂(Tyrosine Kinase Inhibitor,TKI)中的突出代表,收到各国临床和科研的广泛关注。研究表明,在NSCLC (Non-small-cell lung Cancer, NSCLC)患者中,吉非替尼可使EGFR突变阳性患者的肿瘤灶缩小。2011年((NSCLC临床实践指南》中已经将吉非替尼列为可一线用于EGFR突变阳性患者化疗药物。然而,从临床研究数据显示:难以避免的获得性耐药性是临床应用中,该类药物的重要缺陷,制约了该类药物的应用。生长因子信号通路的关键分子——FoxO(Forkhead Streptozotocin制造商 box O)3a转录因子通过调控靶基因发挥广泛的生理生化作用,包括影响细胞的存活、增殖、分化和凋亡,在肿瘤的发生、发展和化疗敏感性等领域受到广泛重视。 目的 系统研究的耐药的PC9细胞——PC9/GR细胞中FoxO3a磷酸化水平的变化,观察FoxO3a在耐药细胞株中的磷酸化和其核转位特点与PC9细胞的不同,探讨其与吉非替尼耐药的关系。 方法 1.细胞培养 实验所用PC9细胞、PC9/GR细胞均在环境条件为37℃±0.3℃、相对湿度≥95%、C02浓度5%±0.1%的细胞培养箱内并用含10%胎牛血清的DMEM高糖培养基传代培养。 2.PC9细胞和PC9/GR细胞对吉非替尼的敏感性的影响 利用MTT法检测敏感细胞株PC9细胞和PC9/GR细胞对吉非替尼的反应性。绘制生长曲线,吉非替尼的浓度为0.5,1,5,10,50,100,500,1000,5000,10000nmol/L,处理时间为72h。 3.

Leave a Reply

Your email address will not be published. Required fields are marked *

*

You may use these HTML tags and attributes: <a href="" title=""> <abbr title=""> <acronym title=""> <b> <blockquote cite=""> <cite> <code> <del datetime=""> <em> <i> <q cite=""> <strike> <strong>